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    选择性雌激素受体调节剂对MC3T3-E1细胞生长分化的调节.docx

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    选择性雌激素受体调节剂对MC3T3-E1细胞生长分化的调节.docx

    选择性雌激素受体调节剂对MC3T3-E1细胞生长分化的调节何陨),唐婉容I吴恙2,王璐2,游涛2(6i0106成都,成都大学医护学院:II腔医学教研室I400016重庆,重庆医科大学:附属口腔医院修复科2)摘要目的探讨选择性雌激素受体调节剂(selectiveestrogenreceptormodulator,SERM)雷洛普芬对小鼠颅顶成骨细胞MC3T3-E1分化的调节及其机制。方法体外培养MC3T3-E1细胞,10'mol1.的雷洛昔芬和雌激素受体拮抗剂ICl-182780刺激细胞,另设空白对照组,24、48、72h后检测各指标。MTT法检测细胞增殖;微量酶标法检测细胞碱性磷酸酶(alkaliphosphatase,A1.P)活性;实时荧光定量聚合酶链式反应(realtimequantitativepolymerasechainreaction,qRT-PC)检测细胞内B-Catenin、雌激素受体a、(estrogenreceptora,ERa、ER)mRN的表达。结果MC3T3-E1细胞分别加入107mol1.的雷洛昔芬和ICIT82780后,相对于对照组,雷洛昔芬处理组的MTT、A1.P结果增加,B-Catenin、ERa和ERBInRNA的表达增高,有统计学意义(P<0.05);ICI-182780组的MTT、A1.P结果降低,B-Catenin、ERa和ERBmRNA的表达均降低,有统计学意义(P<0.05)。结论雷洛昔芬可能通过上调B-Catenin、ERa和ERBmRNA的表达促进MC3T3-E1细胞的增殖分化,而ICI-182780则下调B-Catenin、ERa和ERBmRNA的表达抑制MC3T3-E1细胞的增殖和分化。【关键词选择性雌激素受体调节剂:-catenin:雌激素受体:MC3T3-E1细胞;细胞分化中图法分类号1R329.28;R336;R681.4文献标志码1ASelectiveEstrogenReceptorModulatorsstimulatesthegrowthanddifferentiationofMC3T3-E1cells:involvementofERandwnt-cateninsignalsHeYun1,TangWanrong2,WuYang2,Wan1.u2,YouTao2(lDepartmentofDentistry,SchoolofMedicineandNursing,ChengduUniversity,Chengdu610106;2Departmentofprosthodon(ics,AffiliatedHospitalofStomatology,ChongqingMedicalUniversity,Chongqing.400016»China)AbstractObjectiveTbinvestigatetheregulationandmechanismofselectiveestrogenreceptormodulatorraloxifeneonthegrowthanddifferentiationinMC3T3-E1cellsinvitro.MethodsMC3T3-E1cellswereculturedinvitro.Raloxifene(10-7mol1.)andestrogenreceptorantagonistICI-182780(107mol1.)wereaddedintoculturedmediumrespectively.Andtheblankcontrastgroupwassetted.ProliferationwasassayedbyMTT:TheactivityofA1.Pwasmeasured;Theexpressionsof-cateniestrogenreceptorandestrogenreceptorweredetectedwithqRT-PCR.ResultsMTT,A1.P,andtheexpressionofP-Catenin、ERaandERmRNAweresignificantlyhigherinraloxifene(107mol1.)gloupthanthoseincontrolgroup(V5thecontrol,P<0.05);MTT,A1.P,andtheexpressionofP-Catenin、ERaandERmRNAinICI-182780gloupwerelowerthanthoseincontrolgroup(VSthecontrol,P<0.05).ConclusionRaloxifenecouldpromotetheproliferationanddifferentiationofMC3T3-E1cells,througup-regulatingtheexpressionofP-Catenin、ERaandERmRNA.ButthenICI-182780couldinhibittheproliferationanddifferentiationofMC3T3-E1cells,througdown-regulatingtheexpressionof-catenin>ERaandERmRNA.Keywordsselectiveestrogenreceptormodulator;-catenin;estrogenreceptor;MC3T3-E1cells;celldifferentiationSupportedbytheChongQingYubciScienceandTechnologyCommissionIssue(Yubeifinancialeducation.201132).CorrespondingauthorWuYang.E-mail:【基金项目】重庆市渝北区科委课题(渝北财教201132号)【通信作者吴恙,E-mail:骨质疏松症是绝经后妇女的常见病,与体内雌激素水平降低有关I1.雷洛昔芬(raloxifene,R1.X)作为一种第二代选择性雌激素受体调节剂,对某些组织(如骨骼)具有雌激素样作用,对另一些组织(如乳腺、子宫内膜)具有抗雌激素样作用。与雌激素替代疗法相比,雷洛昔芬既能治疗骨旗疏松症,乂可显著降低患乳腺癌、子宫内膜癌的风险性,因而成为防治绝经后骨质疏松的较为理想的药物。Wnt信号在骨质疏松方面的研究已受到广泛的关注,目前被认为在成骨分化与骨量调节方面具有重要的作用。对于庞大的Wnl信号系统来说,B-catenin是介导WnI信号通路从细胞膜至胞浆再进核传递路径的枢纽分子口用。雷洛昔芬是否可以通过此途径刺激成骨细胞的增值和分化,具体的作用机制仍不十分清楚。本实验将雷洛昔芬和雌激素受体拮抗剂ICl-182780分别作用于MC3T3-E1细胞,观察它们对细胞增殖和A1.P活性的影响,同时采用qRT-PCR的方法观察细胞株中-catenin.ERa和ERB的表达情况,探讨wnt/B-catenin通路是否参与选择性雌激素受体调节剂对成骨细胞增殖的作用过程。1材料与方法1. 1细胞株及试剂MC3T3-E1细胞株购至中国科学院细胞库,雷洛昔芬和IeI-182780均购至美国Santa公司,DMSO(美国Sigma公司),MTT(美国Sigma公司),碱性磷酸酶检测试剂盒(南京建成),RNA抽提试剂盒(北京百泰克),cDNA链合成试剂盒(MBI),2×PCRmastermix(康为世纪),2XSYBRreal-timePCRpremixture(北京百泰克),引物合成由北京三博远志生物技术有限公司完成,MEM培养基(美国HyQOne公司),胎牛血清(美国HyClone公司)。1.2 仪器超净工作台(苏净集团安泰公司),CXh细胞培养箱(上海易亮医疗公司),倒置显微镜(尼康),冷冻离心机(HEMN1.E生产),蛋白核酸分析仪(瑞典安玛西亚公司),DYY-6C型电泳仪(北京六一仪器厂),凝胶成像仪(美国Bio-Rad公司),荧光定量PCR仪(美国Bio-Rad公司),的标仪(奥地利TECAN)»1.3 方法1.3.1 1细胞培养小鼠颅顶前成骨细胞MC3T3-E1细胞接种于含10%胎牛血清的a-MEM培养基中,置于37C、5%CO2、饱和湿度的Ca培养箱中常规培养,每2天换液1次,每45天传代1次。1.3.2 MTT法测细胞增殖取对数生长期的MC3T3-E1细胞,0.25%胰酶消化后离心,PBS清洗、离心、重悬后细胞计数,接种于96孔板中,细胞数为4XIO3个/孔,37、5%CO2细胞培养箱内孵育8h使细胞贴壁后,用不同的培养液(对照组仅加培养液,其他组加入含药培养液)分组培养:对照组:雷洛昔芬(10-7mol1.)组:ICI-182780(10-7mol1.)组。每组设5个复孔,另设调零孔。分别于继续培养的24、48、72h检测吸光度值,终止反应。每孔加入MTT(5g1.)20Ul,继续孵育4h后,弃上清。每孔加DMSO150心,振荡IOmin,使结晶物充分溶解显色后,选择49Onm波长,在酶标仪上测定各孔的吸光度值(490)。细胞增殖率=(处理组。(490)值一对照组。(490)值)/对照组。(490)值×100%,细胞抑制率=(对照组D(490)值一处理组D(490)值对照组D(490)值X100%。1.3.3 微量酶标法测细胞的A1.p活性分组同1.3.2,以细胞数4X103/孔的接种于96孔板,二组给药,一组空白对照,37*C,5%Co2条件下培养72h,每24小时取细胞培养上清液采用微量酶标法操作,每组设3个复孔,另设酚标准孔和调零孔。具体步骤如下:5Ul细胞培养上清液,与50缓冲液和50W基质液混匀,37水浴15min,再加显色剂150立即混匀,于酶标仪520nm波长下测定各孔的吸光度值£>(520),记录结果。A1.P活性增加率和抑制率的计算公式与MTT增殖率的和抑制率的计算公式相同。1.3.4 qRT-PCR检测B-Catenin、ERa和ERB的表达MC3T3-E1细胞以3X10%nl接种于75ml的培养瓶,继续培养8h后加入药物,分组同1.3.2,分别于24、48、72h后收集各组细胞,按照试剂盒说明抽提细胞内总RNA,并用蛋白核酸分析仪测定RNA溶液的浓度和纯度,1%琼脂糖凝胶电泳可见清晰的18S、28S两条带。取IHg总RNA逆转录合成cDNA0然后,采用SYBRGreenreal-timePCR试剂盒对目的基因进行定量检测,分别取1HICDNA,上游和下游Primer各11,2XPremix12.5U1.灭菌蒸储水9.5Ul,反应体系25口1。反应条件:95,C2min,95°C15s,退火15S(具体温度见表1),72延伸40s,40个循环。PCR扩增B-Catenin、ERa、ER,以-actin为内参,通过计算阈值Ct值评估mRNA水平,Ct值用B-actin标化,采用双DE1.T法相对定量进行计算。表1基因序列及其引物基因引物序列(5'-3')退火温度<r>产物长度<bp>上游Ccatcacgacactgcataatct-catenin下游AGeCAAGAATnCACGTTTGTT59122上游CGOCnCTACAGGTCTAATERa下游GGnCnGTCAATGGTGC55257上游CTTGGTCACGTACCeCTTRCERB下游GTATCGCGTCACTCCT5S250上游TGGAATCCrGTGGCATCCATGAAAC-a

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